Inilah kaedah saya untuk merehatkan Lepidoptera. Sama seperti segala-galanya, rasanya setiap orang ada sistem dan prosedur sendiri. Milik saya mungkin bukan yang terbaik untuk setiap situasi, tetapi ia direka untuk spesimen yang disematkan secara pukal. Saya melalui beberapa ribu leps setahun, tetapi ia boleh diskalakan dengan mudah untuk memenuhi keperluan anda.
- Saya menggunakan salah satu bekas Tupperware atas snap sederhana besar ini yang boleh anda temui di mana-mana pasaran. Dimensinya lebih kurang 8″x5.5″x7″. Mana-mana bekas pengedap dengan baik boleh digunakan.
Saya mencipta bingkai sokongan dengan memotong bahagian bawah dan kemudian keluar dari bekas Tupperware yang lebih kecil – pada asasnya sokongan plastik segi empat tepat (bingkai dalam imej adalah kayu, yang merupakan kaedah lama saya). Ini memastikan bahagian bawah menyemat permukaan keluar dari air, yang bermaksud ia sangat mudah untuk diangkat. Meletakkan buih terus ke atas air menyebabkan lekatan sedikit yang menyukarkan penyingkiran, terutamanya tanpa menitis atau percikan. Di dalam bingkai saya memasukkan tuala kertas untuk penyerapan.
Tambah air paip yang mencukupi untuk membasahkan tuala tetapi berhati-hati agar tidak membiarkan air bertakung. Ini hanya langkah berjaga-jaga untuk mengelakkan percikan, terutamanya jika bekas itu terlanggar atau terhantuk. Baru-baru ini saya telah menggunakan air ternyahion, yang nampaknya berfungsi lebih cepat daripada air paip; dan saya mengelak menggunakan air panas kerana lebihan wap menghasilkan terlalu banyak pemeluwapan yang boleh menitis ke spesimen. Teori saya adalah lebih perlahan lebih baik, tiada sebab untuk tergesa-gesa spesimen yang baik! Tetapi jika saya tergesa-gesa, saya akan menambah air suam atau memanaskan perlahan-lahan relaxer memastikan lapisan atas kosong sebagai pelindung titisan. Apabila menggunakan air panas pastikan anda menebat bahagian atas bekas anda untuk membantu menahan pemeluwapan. Tetapi, haba boleh menghasilkan pelinciran berlebihan pada sesetengah spesies, jadi ini harus dielakkan melainkan benar-benar perlu!- Saya memotong dulang penyemat buih agar muat. menggunakan #7 pin (tahan karat adalah yang terbaik) Saya mencipta perimeter di atasnya yang berbilang lapisan dulang boleh diletakkan dalam satu bekas; dua pin tengah diletakkan sebagai tarik. Lapisan bawah tidak dapat menampung spesimen besar dengan sayap berlipat di bahagian punggung, tetapi ia boleh muat sama ada di lapisan atas atau apabila hanya satu lapisan sedang digunakan.
- Saya kemudian memuatkan spesimen dan meletakkan ke dalam relaxer. Untuk spesimen kertas saya hanya meletakkannya rata pada buih, tetapi ia adalah tidak cekap dari segi ruang. Ia biasanya memerlukan 6-8 jam untuk mikroleps dilonggarkan, 1 hari untuk leps kecil atau halus seperti Noctuids langsing atau Geometridae dan 2-3 hari untuk majoriti Noctuidae dan juga Saturniidae. Sphingidae nampaknya biasanya mengambil 4-5 hari-hari, dan yang degil saya suntik dengan sedikit air untuk memudahkan berehat. Saya biasanya boleh menyebarkan kandungan satu relaxer 4-5 jam (kadang-kadang tersebar 2 malam-malam) dan kerana saya hanya ada 20 papan penyebaran Saya tidak pernah memerlukan untuk membina ruang santai kedua.
- saya sudi TIDAK tambahkan sebarang bahan penolak acuan kimia seperti chlorocresol, naftalena atau PDB. Saya menggunakan PDB selama beberapa tahun tetapi wapnya melampau, terutamanya apabila bekerja di meja anda selama berjam-jam. Sebaliknya saya mencuci semua permukaan dengan berhati-hati 95% Etanol untuk pensterilan selepas setiap penggunaan (air mendidih boleh digantikan). Saya membenarkan hanya seminit sisa etanol kerana alkohol yang berlebihan menghalang kelonggaran yang betul dan anda akan mengalami sendi sayap yang rangup., walaupun selepas seminggu. Walaupun kaedah ini menghalang acuan untuk 5-6 hari ia tidak bodoh-bukti. Saya telah terlupa tentang spesimen dan dalam 7-8 hari beberapa acuan ringan akan bermula. Walaupun, Saya dapati kaedah ini menghasilkan spesimen santai yang paling memuaskan daripada apa sahaja yang saya cuba.
Keputusan!
kawan.
Saya pasti perlu mencuba ini, satu-satunya kaedah yang saya pernah belajar untuk leps ialah mencelupkan toraks dalam air mendidih. Saya tidak pernah menyukai idea itu dan sentiasa mempunyai hasil yang bercampur-campur. Pernahkah anda cuba merehatkan kumpulan serangga lain dengan cara ini?
Btw, Saya suka set up dan konsep tapak web anda dan seronok belajar tentang apa yang Lep freaks lakukan 🙂
Ya, ini akan berfungsi dengan baik untuk mana-mana kumpulan serangga, Saya telah merehatkan Hymenoptera dengan cara ini dengan hasil yang hebat. Beberapa kumbang yang sangat besar itu memerlukan usaha tambahan, dan saya tidak membantu di sana!
Saya boleh bayangkan kaedah mencelup adalah kasar, Saya cuba mengelakkan sebarang sentuhan dengan air.
Berikut ialah kaedah santai alternatif yang boleh anda gunakan untuk berehat dengan cepat: Ia menyelesaikan kerja dengan cepat tetapi juga menjadikan sesuatu agak lembap.
http://www.insectnet.com/videos/instruct/billrelax/billrelax.htm
Terima kasih!
Hi,
Adakah anda telah merehatkan mikro lepidoptera ???
Saya maksudkan yang kecil.
Dan bagaimana anda boleh mengawal pada rama-rama tidak basah ??
hormat
Leif
Untuk rama-rama yang sangat kecil saya tidak berehat – perkara seperti Nepticulidae perlu disebarkan semasa sebahagiannya hidup atau sangat, sangat baru dibunuh. Kebanyakan spesies kecil perlu dipasang dengan cara ini jika ada. Apabila saya menjumpai mereka dalam perangkap ringan, saya hanya menyematnya tanpa merebak. Tetapi apabila mereka berada di atas helaian saya menangkap dalam botol kecil untuk persediaan di bawah mikroskop pada keesokan harinya.
Mengekalkan air pada suhu bilik memastikan pemeluwapan minimum. Saya tidak pernah mengalami titisan yang terbentuk pada spesimen.
apa yang saya lakukan jika saya melegakan pepijat seperti 3 masa suka 3 setiap hari dan ia masih tidak fleksibel. ia adalah kumbang rusa jantan dan kakinya bergerak, bukan rahang bawah
Kumbang adalah kes yang istimewa dan selalunya memerlukan kaedah yang sama sekali berbeza untuk berehat. Dengan cepat menenggelamkan spesimen dalam air suam atau mendidih boleh melakukan silap mata – gentile berehat pada suhu bilik adalah benar-benar hanya untuk spesimen halus seperti Lepidoptera. Anda mungkin ingin mencari di tapak blogger kumbang untuk mendapatkan nasihat yang lebih baik tentang bersantai besar, kaku, kumbang. Nasib baik!
“Hanya” 20 papan penyebaran?! Saya sangat iri hati dengan anda dan kemahiran ibu anda. Saya membina papan penyebaran saya sendiri kerana belanjawan dan ia sedikit… teringin.
Bagaimanapun, soalan saya begini. Saya menangkap kebanyakan spesimen saya di sekeliling 9 atau 10 malam, dan terus memindahkannya ke dalam balang bunuh saya. Saya meninggalkan balang semalaman dan menyebarkannya pada waktu pagi sekitar jam 8 pagi. Saya telah melihat beberapa kesukaran dalam menyebarkan antena dan sayap; antena cenderung melengkung dan sayap sentiasa ditekan kuat pada badan, menjadikannya sukar untuk mengekstraknya tanpa kerosakan dan jenis pegas, mahu kembali ke badan sebaik sahaja saya melepaskan forsep. Saya bukan penyebar/penyepit berpengalaman, kerana saya baru sahaja berhenti mengeluarkan spesimen, dan saya tertanya-tanya sama ada anda mempunyai petua untuk saya. Adakah saya meninggalkan mereka dalam balang membunuh terlalu lama? Tak cukup lama? Adakah saya perlu merehatkan mereka selepas hanya satu malam selepas ditangkap?
Terima kasih banyak-banyak, blog anda hebat dan memberi inspirasi kepada ahli entomologi yang bercita-cita tinggi yang rakannya tidak begitu “dapatkannya”… Saya seorang senior di sekolah menengah dan saya kekurangan sumber untuk lepidoptergeekery! Tolong teruskan menulis.
Olivia
Terima kasih atas komen anda Olivia! Apakah jenis balang pembunuh yang anda gunakan? Anda mungkin meninggalkan mereka terlalu lama, jika saya meninggalkannya sepanjang malam, saya cenderung untuk merehatkan mereka selama beberapa jam sebelum merebak hanya untuk membantu melonggarkan keadaan. Jika anda mengumpul di rumah, anda juga harus mempertimbangkan untuk menggunakan peti sejuk anda. Jika anda mengetuk barang dalam balang membunuh, anda boleh memindahkannya ke tupperware dengan beberapa kertas tisu dan memasukkannya ke dalam peti sejuk beku. Apabila anda mengeluarkannya, pastikan anda membenarkan ia mencapai suhu bilik selama sekurang-kurangnya sejam atau lebih sebelum anda mula merebak semula, semuanya harus segar.
Saya baru sahaja menyusun balang pembunuh sementara dengan balang pengetinan dan bola kapas yang direndam pengilat kuku. Saya akan menggunakan penyejuk beku mulai sekarang, walaupun, terima kasih banyak-banyak!
Saya melembapkan kertas tuala dalam piring petri dengan cuka isi rumah untuk merehatkan coleoptera. Biarkan selama 24 jam atau lebih lama jika perlu. Ini berfungsi dengan baik untuk saya. Tiada masalah dengan acuan sama ada jika anda membiarkannya lebih lama.
hello, Saya tidak suka bekerja pada ulat mangga berjalur merah dan saya ingin membuat penyebaran dewasa untuk pemeliharaan, boleh seseorang membantu saya untuk mencapai matlamat itu.
Saya baru mengenali microlepidoptera………..tetapi mempunyai letupan meneroka fauna di kawasan saya. Masalah!……..menyemat. Saya telah mengumpul coleoptera selama lebih 40 tahun dan itu adalah sekeping kek berbanding mikro-leps.
Spesimen yang sayapnya pada asasnya rata apabila ditangkap sem tidak menjadi masalah tanpa mengira saiz, tetapi rama-rama yang mempunyai bentuk segi tiga, bentuk piramid adalah yang sukar bagi saya…….Saya berjaya dengan kira-kira 1 dalam 10 !!! sayap tidak dapat digerakkan ke hadapan tanpa mengira betapa berhati-hati saya menggunakan pin tanpa koyak atau putus sepenuhnya.
Masalah lain adalah di mana saya menggerakkan sayap depan ke hadapan dan kemudian ia terbalik sehingga menyebabkan koyakan panjang di sayap.
Tolong!!!!
Mike Poellot Saratoga, California
Oops maaf kerana lambat membalas! Ya, apabila rama-rama mati dengan sayap menegak, sangat sukar untuk menyediakan spesimen. Saya menyemat rama-rama di antara jari saya seolah-olah ia adalah rama-rama yang besar – kemudian saya menggunakan dua forsep untuk memanipulasi spesimen secara terbalik. Sepasang memegangnya di atas buih dan sepasang lagi membuka sayap semasa saya menyematkannya. Dari situ anda boleh tarik perlahan sayap ke hadapan untuk merebak (jika itu masuk akal?) Ia memerlukan banyak latihan dengan mereka!
Hi there
adakah sesiapa suka berkongsi beberapa tip tentang cara anda berehat saturniidae besar seperti contohnya Argema mittrei atau Actias luna?
Bagaimana untuk mengelakkan badan berbulu untuk menangkap terlalu banyak kelembapan dan masih untuk mendapatkan otot yang sangat lembut santai. Dan sayap tidak direndam dalam kelembapan?
Mungkin meletakkan spesimen secara menegak di dalam kotak santai atau meletakkan konvensional pada permukaan kapas?
Sangat menghargai jika seseorang boleh menerangkan di sini cara anda mengendalikan proses tersebut. Saya mempunyai insiden dengan Actias luna yang bertukar menjadi musnah – air menyatukan bulu-bulu di badan….
Sebarang bantuan dan tip sangat kami hargai.
Kedengaran seperti anda meninggalkannya terlalu lama atau menggunakan air panas? Dengan air bersuhu bilik walaupun rama-rama besar tidak akan menjadi santai dengan sempurna, tetapi anda boleh cuba menyuntik sedikit air suam terus ke dalam badan untuk mempercepatkan keadaan. Picagari kecil adalah murah dan mudah dibeli dalam talian. Anda boleh menyuntik sedikit air panas ke dalam rama-rama dan kemudian berehat 24 jam, yang sepatutnya cukup.
baik – besar, terima kasih banyak. Menggunakan teknik itu untuk papilio antimachus. Bekerja dengan baik. Memang saya biasanya menggunakan air panas dalam kotak santai saya.
Seperti yang anda katakan saya mungkin perlu mencuba dengan air suhu bilik.
Hello,
Saya telah memasang rama-rama dan rama-rama selama beberapa tahun tetapi masih cuba untuk berehat dengan sempurna. Jika saya menggunakan air, acuan spesimen masuk 3 hari dan sebelum ada yang santai. Saya membaca siaran sekumpulan lelaki menggunakan vodka sebagai cecair yang menenangkan. Saya telah menggunakannya untuk bulan lepas dengan hasil yang bercampur-campur. Saya tidak mendapat acuan lagi tetapi banyak saturniid mendapat badan tepu yang meratakan rambut. Mungkin masalah itu ada kaitan dengan keperluan yang jelas untuk menyuntik cecair (vodka) ke dalam badan. Jika tidak, spesimen berbadan berat tidak akan berehat secukupnya, walaupun selepas 4 hari-hari. Saya membeli satu tin P-Choro-m-Cresol daripada Bioquip untuk menambah air tetapi saya tidak tahu berapa banyak kristal yang perlu ditambah kepada berapa banyak air. Apa-apa idea? Nampaknya tidak ada di antara anda yang menggunakan kaedah ini, tetapi saya terbuka kepada mana-mana dan semua cadangan.
Randy
Saya fikir salah satu perkara yang perlu dilakukan apabila hanya menggunakan air ialah mensterilkan bekas anda sebanyak mungkin – yang boleh membantu dengan masalah acuan. Tetapi untuk rama-rama dan kumbang berbadan besar anda boleh menyuntik sedikit air suam ke dalam toraks mereka sebelum berehat. (anda boleh memotongnya dengan alkohol, tetapi saya tidak pernah mendapati ia perlu selagi anda memastikan anda mengeringkan spesimen selepas itu). Ini akan banyak membantu dalam mengurangkan masa yang diperlukan dan benar-benar akan membantu menembusi otot yang padat. Klorocresol boleh berfungsi tetapi ia adalah bahan yang jahat, meninggalkan bau yang kuat dan berpotensi mempunyai kesan sampingan manusia yang berbahaya. Sisa-sisa pada spesimen juga boleh menyebabkan mereka berehat dengan mudah pada masa hadapan walaupun dengan sedikit kelembapan., menyebabkan spesimen terkulai.
Chris,
Terima kasih atas nasihat.
Dalam mensterilkan bekas santai, adakah mencuci dalam mesin basuh pinggan mangkuk mencukupi atau adakah anda mengesyorkan sesuatu yang lebih ketat? Saya menggunakan bekas penyimpanan makanan pembantu getah.
Juga, Saya akan mencuba menggunakan Lysol. Sebarang idea tentang itu?
Randy
Mesin basuh pinggan mangkuk akan menjadi sempurna – tetapi saya tidak begitu tegas mengenainya. Saya hanya mencuci dengan 95% etanol atau saya menggunakan air mendidih. Itu biasanya menjaga perkara dengan cukup baik.
Chris,
Saya akhirnya dapat menyeragamkan ketinggian pelekap rama-rama dalam koleksi saya. Ia akan menjadi tugas yang adil sekarang yang telah saya kumpulkan 300 daripada mereka. Saya mempunyai blok penyemat yang saya beli daripada Bioquip tetapi saya melihat masalah dengan penggunaannya. Ia menyeragamkan kedudukan bahagian bawah spesimen dan bukannya bahagian atas. Memandangkan saya mempunyai segala-galanya daripada biru kecil hingga Saturnid terbesar, ini menimbulkan masalah. Nampaknya saya sepatutnya mahu menyeragamkan kedudukan bahagian atas sayap, atau sekurang-kurangnya bahagian atas toraks daripada bahagian bawah toraks. Apakah jarak yang harus saya gunakan antara manik pada bahagian atas pin ke bahagian atas toraks?
Randy
Saya menyeragamkan ketinggian dengan mencubit bahagian atas pin dan menggerakkan spesimen ke ketinggian itu. Cukuplah jari saya tidak menyentuh spesimen, dan saya hanya memandangnya – ternyata lebih kurang ~.4″/10mm. Setengah inci agak banyak, dan anda tidak mahu spesimen terlalu dekat dengan bahagian atas sehingga jari akan menyentuh spesimen. Beberapa blok menyemat (yang Entomologi Rose reka bentuk aluminium) mempunyai lubang yang lebih besar yang sesuai dengan kepala pin, iaitu tepat 10mm untuk menjauhkan spesimen ke bawah dari atas.
Saya mempunyai beberapa masalah menetapkan rama-rama.
Terutamanya noctuid cth. dart (dan saya mempunyai masalah yang sama dengan kapten juga).
Serangga ini adalah penerbang yang kuat, yang memegang sayap mereka dalam khemah berbentuk v rendah yang dilipat ke dalam badan.
Walaupun ini segar, menggerakkan sayap depan ke dalam kedudukan selalunya menyebabkan sendi pada badan terlipat pada dirinya sendiri (berpusing forewing pada sendi). Saya telah cuba melonggarkan spesimen tetapi tidak berjaya.
Sukar untuk membentangkannya kepada papan pada ketinggian yang betul kerana sayapnya tergelincir ke dalam kedudukan berehat ke dalam hutan – yang bermaksud sisik hilang apabila saya cuba meratakannya ke permukaan tetapan.
Apa yang saya buat tidak betul?
Ia semakin mengecewakan.
Saya membaca sekali dalam panduan Peterson bahawa anda boleh memotong sendi di bawah sayap dengan bilah yang halus, tetapi ini nampaknya tidak berbaloi, dan mungkin tidak perlu – tetapi dengan rama-rama tertentu ini terutamanya (diberi kedudukan sayap) seseorang tidak boleh mencuba ini kerana anda tidak dapat melihat pangkalan sayap.
Adakah saya tidak merehatkan spesimen segar ini cukup lama?
Saya rasa seperti saya kehilangan sesuatu yang jelas.
Mengenai subjek lain, di mana saya boleh mendapatkan forsep mata halus yang sangat baik?
Terima kasih terlebih dahulu untuk sebarang cadangan.
Best,
Mat.